BioVector® VIDOR1 动物视网膜来源上皮/胶质样连续细胞株技术档案 / BioVector® VIDOR1 Cell Line Technical Datasheet

(Veterinary Infectious Disease Organization Retina-1)

一、 背景与来源说明 / Background & Origin

VIDOR1（全称：Veterinary Infectious Disease Organization Retina-1）是由加拿大萨斯喀彻温大学兽医传染病组织（VIDO）建系的动物视网膜来源上皮/胶质样连续细胞系。该细胞系专为兽医病毒学、人畜共患病机制研究、人/兽眼部病毒感染（如伪狂犬病毒、腺病毒、冠状病毒载体等）及体外视网膜屏障与毒理学评估而开发。

二、 细胞生物学特征 / Biological Characteristics

• 组织来源 / Tissue Origin：动物视网膜组织（Retinal Tissue, VIDO Established）

• 生长特性 / Growth Properties：贴壁生长（Adherent），呈上皮样或多角形视网膜细胞形态

• 表达特征与易感性 / Markers & Susceptibility：表达视网膜细胞特异性标记物，对多种兽医相关病毒具有广谱易感性及明显的细胞病变效应（CPE）

• 应用领域 / Applications：兽医病毒学研究、眼科病毒感染模型、疫苗生产与重组病毒载体扩增、体外细胞毒性评估

三、 培养条件与传代指南 / Culture & Handling Protocols

1. 完全培养基配方 / Complete Medium Formulation

• 基础培养基 / Basal Medium：DMEM / F-12 或 High-Glucose DMEM

• 血清添加 / Serum：10% 优质胎牛血清（FBS）

• 添加剂 / Supplements：

  • L-谷氨酰胺 / L-Glutamine：2 mM

  • 丙酮酸钠 / Sodium Pyruvate：1 mM

  • 双抗 / Antibiotics：100 U/mL 青霉素 + 100 µg/mL 链霉素

2. 培养条件与传代规范 / Incubation & Subculture

• 培养环境 / Conditions：37°C，5% $\text{CO}_2$，饱和湿度。

• 传代操作 / Subculture：

  1. 吸除旧培养基，以无钙镁 PBS 缓冲液清洗 1–2 次。

  2. 加入 0.25% Trypsin-0.53 mM EDTA 消化液，37°C 孵育 2–3 分钟，镜检观察细胞脱落变圆。

  3. 加入含血清的完全培养基终止消化，轻柔吹打制成单细胞悬液。

  4. 按 1:3 至 1:6 比例传代接种，每 2–3 天换液或传代一次。

四、 技术指标简表 / Technical Data Summary

BioVector® VIDOR1 Cell Line Technical Datasheet (English)

1. Background & Context

The VIDOR1 cell line (Veterinary Infectious Disease Organization Retina-1) is a continuous animal retinal cell line established by the Veterinary Infectious Disease Organization (VIDO) at the University of Saskatchewan. It serves as an essential in vitro model for veterinary virology, viral vector propagation, host-pathogen interactions, and ocular toxicity testing.

2. Biological Characteristics

• Organism & Tissue: Animal Retinal Tissue (VIDO).

• Growth Properties: Adherent monolayer; epithelial-like morphology.

• Applications: Veterinary virus isolation, intracellular replication studies, and viral vaccine production.

3. Culture Protocols

• Basal Medium: DMEM/F-12 or High-Glucose DMEM + 10% FBS + 1% Pen-Strep.

• Incubation Parameters: 37°C, 5% $\text{CO}_2$.

• Subculture Method: Enzymatic dissociation using 0.25% Trypsin-EDTA for 2–3 min. Split ratios $1:3$ to $1:6$ every 2–3 days.

4. Technical Data Summary

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